Myriade

Démonstration

Mesurer dans une goutte la concentration et la taille de nanoparticules
en moins d’une minute ? C’est parti…

Une mesure ultra rapide
grâce à 4 avantages déterminants

Videodrop filme en temps réel dans une simple goutte les particules biologiques entre 80 nm & 500nm et fournit une image microscopique jusqu’à 10 µm. Le dispositif compact, assisté d’un logiciel dédié, rend la manipulation très facile à réaliser. Aucun marquage n’est nécessaire sur l’échantillon analysé. On peut travailler sur des solutions non purifiées et sur de petits volumes d’échantillon (5 µL) avec une gamme de concentration de 10^8 à 10^10 particules/ml.

Résultats en temps réel

Facile
à utiliser

Sans
marquage

Sans
purification

Applications

Une proposition de valeur basée sur de slides démonstrations .

Videodrop, ideal tool for Lentiviral vector bioproduction follow-up

Videdrop, a suitable system for in-process controls of lentiviral vectors in GMP

Videodrop, Assessing the particle concentration of mRNA-LNP

Videodrop, Performance qualification of a system measuring size & concentration of plastic nanoparticles

Videodrop: For a fast characterization of Extracellular Vesicles following a standard protocol

White Paper, Nanoparticles size & concentration using Interferometric Light Microscopy (ILM)

Technologie

Fondée sur les principes de l’interférométrie, le Videodrop permet de « voir » des nanoparticules biologiques dans la gamme 80-500 nm.

L’observation se déroule en 3 étapes.

Le Dispositif

Une solution de 5 à 10 µL contenant les nanoparticules est placée dans une microcuvette éclairée par une simple LED, tandis qu’un système optique, couplé à une caméra, filme leurs mouvements.

La Vidéo

Le film obtenu montre en temps réel le déplacement des nanoparticules.
Un algorithme de tracking permet de suivre la trajectoire des éléments observés.

Observation d’une goutte au Videodrop : Chaque point noir/blanc correspond au signal interférométrique d’une nanoparticule.

L’Analyse

Grâce à son logiciel dédié, le calcul de la vitesse et des distances de ces trajectoires permet de définir le type, la taille et le nombre des éléments observés.
Le résultat s’affiche sur l’interface utilisateur de manière quasi instantanée.

Interface utilisateur du Videodrop. Les résultats de l’analyse s’affichent en temps réél.

À PROPOS de Myriade

Myriade est une entreprise française créée en 2017 qui développe une technologie innovante d’imagerie de particules nanométriques.

Myriade est née du partenariat entre Quattrocento (Company Builder, spécialisé dans les équipements pour les sciences du vivants), Paris Sciences et Lettres, et l’équipe scientifique.

Issue des travaux de l’Institut Langevin, un laboratoire académique français spécialisé dans les technologies optiques et ultrasonores pour les sciences du vivant, la technologie du Videodrop repose sur une technique d’interférométrie mono-bras.

Elle permet de visualiser sans marquage des nanoparticules vivantes comme les virus, les phages, ou les vésicules extracellulaires.

Le procédé a été développé par le professeur Claude Boccara à la demande de la spécialiste en virologie, le professeur Martine Boccara, qui cherchait une méthode rapide pour répertorier des virus présents dans les échantillons d’eau de mer récoltée lors de l’expédition Tara Oceans en 2013.

*La technologie est protégée par une famille de brevet

TARA OCEANS

L’expédition Tara Oceans a eu pour objectif de faire l’inventaire des écosystèmes planctoniques marins (depuis les virus jusqu’aux larves de poissons) dans le but de comprendre leur fonctionnement, mais aussi d’anticiper leur relation aux changements climatiques.
Elle a navigué pendant 6 mois et parcouru 25 000 km pour mener à bien sa mission. Et le 22 mai 2015, la prestigieuse revue Science publiait les cinq premiers grands résultats scientifiques de l’expédition. Depuis, des centaines de chercheurs d’institutions prestigieuses analysent les échantillons recueillis et multiplient les découvertes.

Le bateau Tara a quitté Lorient le 19 mai 2013 pour revenir le 6 décembre de la même année après avoir parcouru 25 000 km.

L’ÉQUIPE OPÉRATIONNELLE

Philippe GARABEDIAN
Ventes, Marketing & Operations

François MAZUEL
R&D, Production & Support

Marie BERGER
Applications

Lucas IONESCO
Business Developement

Donatien RAMIANDRISOA
R&D

Kevin AFFANNOUKOUE
R&D

Nicolas Rose
Applications & Support

L’ÉQUIPE SCIENTIFIQUE

Pr Martine Boccara
Virologue, professeur à l’UPMC, ancien membre de l’IBENS, chercheur au Muséum d’Histoire Naturelle.

Pr Claude Boccara
Physicien français, spécialiste en optique. Il est directeur scientifique honoraire de ESPCI et membre du conseil scientifique de l’Institut Langevin.

LES PUBLICATIONS

Virus

Reference	Title	Institution	Type	Link
Boccara M, et al.	Full-field interferometry for counting and differentiating aquatic biotic nanoparticles: from laboratory to Tara Oceans.	Institut Langevin, ESPCI ParisTech, PSL Research University, Paris, France	Virus	Link
Turkki V, et al.	Experimental Evaluation of an Interferometric Light Microscopy Particle Counter for Titering and Characterization of Virus Preparations.	KCT, Kuopio Center for Cell and Gene Therapy, Finland	Lentivirus	Link

EVs

Reference	Title	Institution	Type	Link
Sabbagh Q, et al.	The von Willebrand factor stamps plasmatic extracellular vesicles from glioblastoma patients.	SOAP, CRCINA, Université de Nantes, France	EVs	Link
André-Grégoire,G., et al	Inhibition of the pseudokinase MLKL alters extracellular vesicle release and reduces tumor growth in glioblastoma.	SOAP, CRCINA, Université de Nantes, France	EVs	Link
de Poret, A., et al.	Extracellular vesicles containing the I-BAR protein IRSp53 are released from the cell plasma membrane in an Arp2/3 dependent manner.	CEMIPAI, CNRS Montpellier, France	EVs	Link
Sausset, R., et al.	Comparison of interferometric light microscopy with nanoparticle tracking analysis for the study of extracellular vesicles and bacteriophages.	INRAe, Jouy en Josas, France	EVs	Link
Troha, K., et al.	Autologous Platelet and Extracellular Vesicle-Rich Plasma as Therapeutic Fluid: A Review.	Laboratory of Clinical Biophysics, University of Ljubjanja, Slovenia	EVs	Link
Takada, A., et al.	Exploration of microRNA Biomarkers in Blood Small Extracellular Vesicles for Enzootic Bovine Leukosis.	Faculty of Applied Biological Sciences, Gifu University, Japan	EVs	Link
André-Grégoire,G., et al	Isolating plasma extracellular vesicles from mouse blood using size-exclusion chromatography, density gradient, and ultracentrifugation.	SOAP, CRCINA, Université de Nantes, France	EVs	Link

Phages

Reference	Title	Institution	Type	Link
Roose-Amsaleg C, et al.	Utilization of interferometric light microscopy for the rapid analysis of virus abundance in a river.	Institut de Biologie de l’Ecole Normale Supérieure (IBENS), PSL Research University, Paris, France	Phages	Link
Dugat-Bony E, et al.	Viral metagenomic analysis of the cheese surface: A comparative study of rapid procedures for extracting viral particles.	INRA, AgroParisTech, Université Paris-Saclay, Jouy-en-Josas, France	Phages	Link

LNPs, Others

Reference	Title	Institution	Type	Link
Ryo Kato, et al.	Highly Stable Polymer Coating on Silver Nanoparticles for Efficient Plasmonic Enhancement of Fluorescence.	Institute of Post-LED Photonics, Tokushima University	Silver nanoparticles	Link
Romolo, A., et al.	Assessment of Small Cellular Particles from Four Different Natural Sources and Liposomes by Interferometric Light Microscopy.	Laboratory of Clinical Biophysics, University of Ljubjanja, Slovenia	Evs, liposomes, spruce vesicles	Link
Jeran, M., et al.	Small Cellular Particles from European Spruce Needle Homogenate.	Laboratory of Clinical Biophysics, University of Ljubjanja, Slovenia	Spruce vesicles	Link